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生物表面活性劑產(chǎn)生菌的篩選及對PAHs污染環(huán)境的修復(fù)效果研究(二)
來源:農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào) 瀏覽 22 次 發(fā)布時(shí)間:2025-07-31
1.4生物表面活性劑的提取、鑒定和臨界膠束濃度測定
取培養(yǎng)72 h的細(xì)菌發(fā)酵液在4℃、5000×g離心30 min,取上清液用1 mol·L-1HCl調(diào)節(jié)pH為2.0,然后加入等體積的三氯甲烷/甲醇(2∶1,V∶V)混勻,萃取三次合并有機(jī)相,用無水硫酸鈉干燥后,45℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除去有機(jī)溶劑,得到淺黃色漿狀物,即為生物表面活性劑粗產(chǎn)物。
薄層色譜:取0.2 g提取的上述粗產(chǎn)物溶于1 mL的氯仿中,點(diǎn)樣于硅膠G板進(jìn)行薄層色譜分析,三氯甲烷/甲醇/水(65∶15∶1,V∶V)為展開劑,用不同的顯色劑顯色。(1)苯酚-硫酸試劑:3 g苯酚與5 mL硫酸溶解于95 mL乙醇中,如果顯棕色斑點(diǎn),則有糖脂存在,反之糖脂不存在;(2)茚三酮顯色劑:0.5 g茚三酮溶于100 mL丙酮中,如果斑點(diǎn)顯紅色,則有脂肽存在,反之脂肽不存在。
紅外掃描分析(Fouriertransforminfraredspectrometer,F(xiàn)T-IR):將生物表面活性劑粗產(chǎn)品溶于三氯甲烷后,在制備型硅膠薄板上進(jìn)行分離,依照顯色帶位置刮下目的硅膠層,用三氯甲烷/甲烷(1∶1,V∶V)提取后于40℃下減壓蒸干,得到部分純化的生物表面活性劑。將上述生物表面活性劑溶于甲醇,采用KBr壓片法(1~2 mg樣品+200 mgKBr,干燥處理后研細(xì)),混合壓成透明薄片后紅外掃描分析測定。
發(fā)酵產(chǎn)物臨界膠束濃度測定(Critical micelle concentration,CMC):精確稱取上述提取所得的產(chǎn)物粗品溶于蒸餾水中,配制成不同濃度梯度(0~500 mg·L-1)的產(chǎn)物溶液,測定溶液的表面張力,并依據(jù)表面活性劑濃度-表面張力曲線求得臨界膠束濃度值。
1.5細(xì)菌發(fā)酵條件優(yōu)化
1.5.1測定指標(biāo)
發(fā)酵液表面張力值以吊環(huán)法測定,乳化性能采用超聲體積比法測定。發(fā)酵液培養(yǎng)后,離心收集菌體,于105℃烘干至恒重后稱重,以菌體干重表示生物量。發(fā)酵液培養(yǎng)后,離心收集上清液,用等體積乙酸乙酯萃取2次后,45℃減壓蒸干,將殘余物溶于等體積的0.05 mol·L-1NaHCO3中,以硫酸苯酚法測定糖脂含量。
1.5.2碳源對菌株生長及產(chǎn)生表面活性劑的影響
取150 mL三角瓶,每瓶中加入50 mL無機(jī)鹽培養(yǎng)基,分別加入10 g·L-1的葡萄糖、甘油、花生油、可溶性淀粉、液體石蠟、麥芽糖、乳糖、蔗糖(對照組不加碳源)。3 d后分別測定發(fā)酵液的表面張力值、乳化性、生物量、糖脂含量。每個(gè)處理三次重復(fù)。
1.5.3氮源對菌株生長及產(chǎn)生表面活性劑的影響
以碳源實(shí)驗(yàn)中獲得的最優(yōu)碳源作為選定碳源,取10 g碳源加入1 L不含(NH4)2SO4無機(jī)鹽培養(yǎng)基中。取150 mL三角瓶,每瓶中加入50 mL上述培養(yǎng)基,分別加入2 g·L-1的硝酸鈉、硫酸銨、脲、硝酸銨(對照組不加氮源)。3 d后分別測定發(fā)酵液的表面張力值、乳化性、生物量、糖脂含量。每個(gè)處理三次重復(fù)。
1.5.4碳氮比對菌株生長及產(chǎn)生表面活性劑的影響
取150 mL三角瓶,每瓶中加入50 mL含不同碳氮源的無機(jī)鹽培養(yǎng)基。固定氮源為2 g·L-1,分別加入已優(yōu)化的碳源,控制比例為1、5、10、15、20、25、30、35、40(對照組不加氮源)。3 d后分別測定發(fā)酵液的表面張力值、乳化性、生物量、糖脂含量。每個(gè)處理三次重復(fù)。
1.5.5溫度對菌株生長及產(chǎn)生表面活性劑的影響
取150 mL三角瓶,每瓶中加入50 mL上述已優(yōu)化的無機(jī)鹽培養(yǎng)基。控制搖床溫度在15℃、20℃、25℃、30℃、35℃、40℃。3 d后分別測定發(fā)酵液的表面張力值、乳化性、生物量、糖脂含量。每個(gè)處理三次重復(fù)。
1.5.6 pH對菌株生長及產(chǎn)生表面活性劑的影響
取150 mL三角瓶,每瓶中加入50 mL上述已優(yōu)化的無機(jī)鹽培養(yǎng)基??刂婆囵B(yǎng)基pH為4、5、6、7、8、9、10、11、12、13。3 d后分別測定發(fā)酵液的表面張力值、乳化性、生物量、糖脂含量。每個(gè)處理三次重復(fù)。
1.5.7NaCl濃度對菌株生長及產(chǎn)生表面活性劑的影響
取150 mL三角瓶,每瓶中加入50 mL上述已優(yōu)化的無機(jī)鹽培養(yǎng)基??刂婆囵B(yǎng)基NaCl濃度為0、5、10、15、20、25、30、50、80、120、160 g·L-1。3 d后分別測定發(fā)酵液的表面張力值、乳化性、生物量、糖脂含量。每個(gè)處理三次重復(fù)。
1.5.8菌株147發(fā)酵動態(tài)圖
取150 mL三角瓶,每瓶中加入50 mL上述已優(yōu)化的無機(jī)鹽培養(yǎng)基。在12、24、36、48、60、72、84、96、108、120、132、144 h后分別測定發(fā)酵液的表面張力值、乳化性、生物量、糖脂含量。每個(gè)處理三次重復(fù)。
1.6生物表面活性劑對多環(huán)芳烴增溶效果
25 mL三角瓶中加入過量的苯并[a]芘、芘、熒蒽和10 mL不同濃度的生物表面活性劑粗產(chǎn)物溶液,然后加入0.02%的疊氮化鈉抑制微生物的生長。蓋好塞子并用封口膜封口后,25℃、50 r·min-1振蕩48 h后,將溶液轉(zhuǎn)移至離心管中5000 r·min-1離心15 min,取上清液加入等體積的二氯甲烷∶正己烷=1∶1(V∶V)萃取3次,收集洗脫液并于40℃濃縮至干,用甲醇定容到2 mL,過0.22μm孔徑濾膜后HPLC分析。